1 材料与方法

1.1 试验饲料

试验所用的发酵饲料由南京宝辉生物饲料有限公司提供，该发酵饲料采用玉米、豆粕等优质原料作为发酵底物，接种芽孢杆菌、乳酸菌、酵母菌等高活性益生菌种，采用多菌种多底物好氧+厌氧深度发酵技术制备。经测定，其主要营养指标如下：粗蛋白（以干物质计）≥23.0%；粗脂肪（以干物质计） ≥2%；粗纤维（ 以干物质计） ≤6%；粗灰分（ 以湿品计）≤5.0%；酸溶蛋白（ 占百分比）≥25.0%；总酸（以乳酸含量计，以湿品计）≥3.0%；pH 值≤4.5；水分含量（占百分比）≤45.0%。配合饲料购自江苏海普瑞饲料有限公司。对照组投喂配合饲料，命名为F0；此外，设置四组试验组，每组在日投喂量基础上额外配伍日投喂量5%、10%、15%和20%的发酵饲料，并将各试验组依次命名为F5，F10，F15，F20。配合饲料营养组成见表1。

1.2 试验蟹与养殖管理

试验所用的中华绒螯蟹选自南京市浦口区的一个养殖池塘中，养殖试验在南京市浦口区星甸镇南京农业大学水产试验基地的室外白皮桶中进行。在饲养试验开始之前，幼蟹要暂养在白皮桶中两周，以适应白皮桶的养殖环境和饲料投喂的养殖模式。试验共使用了150 只大小均一，体质健康，螯足健全的河蟹（平均初始体重1.01±0.16 g），将他们按公母比例1:1 随机分为5 组，每组设置3 个重复，每个重复为10 只河蟹，养殖于15 个白皮桶中（2×1.2×0.5 m，长:宽:高）。每个白皮桶中设置8 根PVC 管和适量的水葫芦，以供河蟹躲避，防止相互残杀。在整个试验期间，白皮桶中持续充气，定期换水1/3，每天监测水温、pH 和溶解氧，并控制在24±5 ℃、8.0~8.6、5 mg/L。正式养殖试验持续了59 d，直到几乎所有的河蟹都完成了两次脱壳，试验才停止。在饲养过程中，每天喂食一次（17: 00），饱食投喂。投喂饲料的量根据天气和饲养环境进行适当的调整，确保在投喂3 小时后不留下饵料。每天观察各组蟹的摄食、残饵、死亡情况，做好详细记录以备分析。我们保证所有有关于活蟹实验的协议都遵守南京农业大学爱护与使用实验动物的道德指导。本研究由南京农业大学动物保护与利用委员会批准（许可证号: SYXK （Su） 2011-0036）。

1.3 样品采集与分析测定

1.3.1 样品采集

采样前，所有河蟹饥饿处理48 h，依次测量每只河蟹的体重，用来计算增重率（WGR）和特定生长率（SGR）。然后从每个白皮桶中随机选择三只河蟹进行取样。每只蟹抽取等量血淋巴用于指标测定。血淋巴抽取后立刻在4 ℃下3500 r/min 离心10 min，接着立刻吸取上层清液装入离心管中保存于-20 ℃，用于后期抗氧化和免疫酶活性的测定。最后在无菌环境下完全采集了河蟹的肝胰腺并称重，全部装入冻存管中保存于-20 ℃，用于后期蛋白代谢酶活性的测定。

1.3.2 生长指标及计算方法

蟹生长相关指标：增重率（WGR）、特定生长率（SGR）、存活率（SR）、肝体比（HSI）的计算公式如下：增重率（WGR，%）=(W1-W0)/W0×100特定生长率（SGR，%）=(LnW1-LnW0)/D×100存活率（SR，%）=N1/N0×100肝体比（HIS，%）=W2/W3×100式中W0 为蟹的初始体质量（g），W1 为终末体质量（g），D 为试验养殖的天数（d），N0 为试验开始时河蟹的数量（只），N1 为试验结束时河蟹的数量（只），W2 为肝胰腺的重量（g），W3 为相应河蟹的重量（g）。

1.3.3 血淋巴抗氧化指标测定

各酶活测定采用南京某科技有限公司提供的试剂盒。脂质过氧化物（LPO）的测定方法是在45 ℃温度下，一共反应60min，一分子LPO 会和两分子的显色剂反应，最终产生了稳定的生色团，它在568 nm 下有最大吸收峰，使用标准曲线公式计算吸光度值得到检测物中LPO 的含量；过氧化氢酶（CAT）的测定方法为钼酸铵可迅速中止CAT 分解过氧化氢的反应，加入钼酸铵后，未反应的过氧化氢与钼酸铵反应产生淡黄色的络合物，然后在405nm 处测定吸光度的变化量，就可以计算出CAT 的活力；总抗氧化能力（T-AOC）的测定方法是根据抗氧化物存在时，ABTS 生成ABTS+的过程会被抑制，只需要测定405 nm 处ABTS+的吸光度值就能计算出样品的总抗氧化能力（T-AOC）。

1.3.4 血淋巴免疫指标测定

血淋巴中的酸性磷酸酶活性、总蛋白含量和白蛋白含量的测定均使用南京建成生物工程研究所提供的试剂盒。酸性磷酸酶（ACP）的测定是根据ACP 能将磷酸苯二钠分解为游离酚和磷酸，酚在碱性溶液中可以和4-氨基安替吡啉反应，最后被铁氰化钾氧化，生成了红色的醌衍生物，根据红色的深浅就能测定ACP 酶活性的高低；总蛋白含量的测定是利用在碱性条件下，蛋白能将Cu2+还原，而Cu与BCA 试剂反应形成了紫色络合物，在562 nm 有最大吸收峰，吸光度值和浓度成正比关系，因此只需要测吸光度即可进而计算出待测蛋白的浓度；白蛋白采用溴甲酚绿比色法。球蛋白含量=总蛋白-白蛋白，白球比=白蛋白/球蛋白×100。

1.3.5 肝胰腺蛋白代谢酶活性测定

测定胰蛋白酶、胃蛋白酶、Na+，K+-ATP 酶、谷草转氨酶和谷丙转氨酶的试剂盒均购自南京某科技有限公司。为测定肝胰腺中的胰蛋白酶、胃蛋白酶、Na+，K+-ATP 酶、谷草转氨酶和谷丙转氨酶的活性，需要首先取样品在9 倍体积的生理盐水中匀浆，然后在离心机上，4 ℃条件下，5000 r/min离心15 min，最后取出中层清液用于酶活性的测定。肝胰腺中胰蛋白酶活性的测定的原理是利用胰蛋白酶能催化水解精氨酸乙酯的酯链，并在253nm 处提升了吸光度。酶的活性大小可以依据吸光度的前后变化来计算。肝胰腺中胃蛋白酶活性的测定原理是利用胃蛋白酶将底物蛋白质水解为含酚的氨基酸，然后根据含酚氨基酸可以还原酚试剂得到蓝色物质，采用比色法测定胃蛋白酶活性的高低。肝胰腺中Na+，K+-ATP 酶活性测定的原理是ATP 酶可以分解ATP 形成ADP 和无机磷，只需要测定产生的无机磷的含量就可以得出ATP 酶活性的高低。肝胰腺中谷草转氨酶和谷丙转氨酶的活性测定采用赖氏法。

1.4 数据统计与分析

采用SPSS 25.0 软件对试验所得的数据进行细致的统计分析，第一步采用单因素方差分析方法（one-way ANOVA），然后进行 Turkey’s 检验法进行多重比较以分析所有数据的差异性。试验数据统计时均以平均数±标准误的形式表示，且数据都保留2 位小数。若组间比较之后，P 值等于或小于0.05，则认为有显著性差异（P ≤ 0.05）。

2 结果

2.1 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹生长的影响

根据表2 可知，在日投喂量基础上额外投喂20%比例以下的发酵饲料后，各组增重率和特定生长率均随着额外投喂比例的增加，呈现先升高后降低的趋势，并且各处理组均较对照组显著升高（P ＜0.05）。

幼蟹的存活率随着发酵饲料额外投喂量增多，而呈逐渐下降的趋势，但是各处理组较对照组差异不显著（P ＞ 0.05）。此外，各组间肝胰腺指数差异不显著（P ＞ 0.05）。

2.2 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹抗氧化能力的影响

根据表3 可知，随着额外投喂发酵饲料量的增加，幼蟹血淋巴中脂质过氧化物含量升高，但各处理组都低于对照组，且各组间数值差异不显著（P ＞ 0.05）。

血淋巴中过氧化氢酶含量随着额外投喂发酵饲料量的增加呈现先升高后降低的趋势，但都高于对照组，并且在额外投喂10%发酵饲料时达到最大值，其中F5、F10 和F15 组较对照组显著升高（P＜ 0.05）。各组间血淋巴中总抗氧化能力随着额外投喂发酵饲料量的增加，呈现先升高后降低的趋势，并且在F10 组达到最大，各处理组较对照组没有显著差异（P ＞ 0.05）。

2.3 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹非特异性免疫能力的影响

由表4 可以看出，各处理组幼蟹血淋巴中酸性磷酸酶活性均高于对照组，但是差异不显著（P ＞0.05）。随着发酵饲料额外投喂量的提高，各组幼蟹血淋巴中总蛋白、白蛋白和球蛋白含量均呈现先升高后降低的趋势，但是各处理组较对照组差异不显著（P ＞ 0.05）。

随发酵饲料额外投喂量的增加，各组白球比先降低后升高，且各处理组较对照组无显著差异（P＞0.05）。

2.4 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹蛋白代谢酶活的影响

根据表5 可知，在日投喂量基础上额外投喂20%比例以下的发酵饲料，幼蟹肝胰腺中胰蛋白酶和胃蛋白酶的活性随着投喂量的增加，呈现逐渐下降的趋势，但都高于对照组，其中F5 组、F10 组、F15 组肝胰腺中胰蛋白酶活性较对照组显著升高（P ＜ 0.05），F5 组胃蛋白酶活性较对照组显著升高（P ＜ 0.05），其他处理组较对照组无显著差异（P ＞ 0.05）。

由表5 可知，随着发酵饲料投喂量增多，肝胰腺中谷草转氨酶和谷丙转氨酶活性逐渐下降，但都高于对照组，其中F5 组谷草转氨酶活性较对照组显著升高（P ＜ 0.05），F5、F10 组谷丙转氨酶活性较对照组显著升高（P ＜ 0.05），其他处理组谷草转氨酶和谷丙转氨酶活性则较对照组差异不显著（P ＞ 0.05）。

3 讨论

3.1 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹生长的影响

发酵饲料是以微生物、复合酶为生物饲料发酵剂菌种，将饲料原料转化为微生物菌体蛋白、生物活性小肽类氨基酸、微生物活性益生菌、复合酶制剂为一体生物发酵饲料。本试验结果表明，发酵饲料配伍配合饲料投喂，可以显著提升中华绒螯蟹幼蟹的增重率和特定生长率，并且在额外投喂10%发酵饲料时，生长性能达到最好，表明发酵饲料配伍配合饲料投喂能够促进中华绒螯蟹幼蟹的生长。研究已经发现，饲料经过发酵后，经历了一系列的生物化学反应，一部分大分子的纤维素和蛋白质被分解成小分子，易于动物的消化吸收，从而提高了饲料中有机质和蛋白质的消化率。此外，饲料经过大量的益生菌发酵后，拥有了特殊的酸香味和良好的适口性，可刺激动物的食欲，增加其采食量。因此，发酵饲料配伍配合饲料投喂，对中华绒螯蟹幼蟹的促生长作用主要是因为发酵饲料有更好的消化利用率、诱食作用和良好的适口性。

3.2 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹抗氧化能力的影响

在动物体内，抗氧化防御体系主要通过抗氧化酶和还原性物质来消除细胞代谢过程中产生的氧自由基，避免其对动物机体造成氧化损伤，是水生动物应对应激和胁迫的重要生理机制，关系到水生动物的健康状态。脂质过氧化物是机体中的活性氧与生物膜磷脂中的多聚不饱和脂肪酸反应的产物，在氧化应激时，其含量会大幅升高，它们能与细胞中的大分子物质如蛋白质和DNA 作用，进而引起细胞的氧化损伤，其含量的高低反映了动物体内脂质过氧化的水平。本试验中随着发酵饲料额外投喂量的增加，幼蟹血淋巴中的脂质过氧化物含量先降低后升高，并且都低于对照组，说明发酵饲料的投喂减少了中华绒螯蟹体内的膜脂质过氧化产物，降低了过氧化水平。过氧化氢酶广泛存在于动物体各组织中，其主要功能是催化细胞内的过氧化氢分解，防止其氧化造成细胞损伤。徐奕晴等人的试验发现提高饲料中生物发酵饲料的含量，中华绒螯蟹幼蟹的肝胰腺中过氧化氢酶含量先上升后下降。本试验中，幼蟹血淋巴中过氧化氢酶活性随发酵饲料额外投喂量的增多，呈现先上升后下降的趋势，并均高于对照组，表明发酵饲料的投喂可以有效促进中华绒螯蟹幼蟹抗氧化能力的提高，并且在额外投喂10%时取得最好的促进效果。总抗氧化能力常被用作衡量动物体内抗氧化系统能力的综合指标，它的高低可以反映机体对抗外来刺激的能力和代谢体内自由基的状态。正常的情况下，动物在新陈代谢的过程中，氧自由基不断生成，又不断被消除，处在动态平衡中。本试验中测得各组幼蟹血清中的总抗氧化能力无显著差异，表明蟹体内氧自由基的生成和及时清除均处于合理的动态平衡中。

3.3 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹非特异性免疫能力的影响

研究已经证明，虾、蟹等甲壳动物不具有特异性免疫，它们主要依靠血淋巴中的免疫相关酶、免疫因子和酚氧化酶原激活系统等来进行免疫，称为非特异性免疫。血淋巴中酸性磷酸酶是溶酶体的重要组成部分，具有吞噬细胞杀菌的作用，能够消除外来物，进行机体的防御。陈昌福等人采用免疫多糖对南美白对虾进行腹腔注射后，发现其肝胰腺中的酸性磷酸酶活性提高，表明了体内免疫系统的激活。因此酸性磷酸酶活性可被用来评判甲壳动物的免疫能力。本试验中观察到随着发酵饲料额外投喂量的增加，酸性磷酸酶活性呈现先升高后降低，但都高于对照组的现象，可以认为发酵饲料可以提升幼蟹免疫能力，并且在10%额外投喂时达到最好效果。血淋巴中总蛋白的含量除了能够反映动物体内蛋白代谢和营养吸收的水平，它同时也与机体的免疫有密切的关联。血淋巴中的球蛋白主要参与动物机体的体液免疫，因此其含量的升高可以反映机体的免疫力提高。研究表明，饲料经益生菌发酵后投喂仔猪，其血清中的总蛋白以及球蛋白含量均提高。在本试验中，发酵饲料配合基础饲料投喂后幼蟹血淋巴中总蛋白和球蛋白含量均较对照组升高，说明发酵饲料对幼蟹的健康生长有正向促进作用，并且可以提高幼蟹的免疫能力。

3.4 发酵饲料配伍配合饲料投喂对中华绒螯蟹幼蟹蛋白代谢酶活的影响

蛋白酶的主要作用是催化蛋白质的水解，而谷草转氨酶和谷丙转氨酶是肝脏中最重要的氨基转移酶，与机体的氨基酸代谢密切相关。大量研究已经证明，肝胰腺中蛋白酶活性和转氨酶活性的升高，说明了动物体内蛋白质的吸收和氨基酸的代谢更为旺盛，表明动物体对饲料中的蛋白质利用率升高。Abasubong 等在饲料中添加低聚木糖后，观察到团头鲂肝脏中谷草转氨酶和谷丙转氨酶活性升高，日增长指数升高。Ketnawa 等模拟了猪体外消化发酵豆粕的试验，发现豆粕经过发酵后改善了蛋白质的消化率。一方面在多菌种混合发酵饲料的过程中，菌种会产生大量蛋白酶，随饲料进入动物体后促进动物的消化吸收；另一方面饲料经过发酵后，其中的大分子蛋白质被分解为小分子的肽类，而抗营养因子如胰蛋白酶抑制因子、植物凝集素、植酸等则大部分被去除，有利于动物对蛋白的吸收。本试验中，随着发酵饲料额外投喂量的增加，幼蟹肝胰腺中胰蛋白酶、胃蛋白酶、谷草转氨酶、谷丙转氨酶活性均呈现先升高后降低的趋势，并且都高于对照组，表明了发酵饲料的额外投喂可以有效促进幼蟹的蛋白质和氨基酸的代谢，最终促进了中华绒螯蟹幼蟹的生长发育。本试验的结果表明，在配合饲料投喂的基础上，额外投喂日投喂量20%以下的发酵饲料，中华绒螯蟹幼蟹生长性能显著升高，抗氧化和免疫能力加强，蛋白酶和转氨酶活性提升，并且对生长、抗氧化和免疫能力的促进作用均在10% 额外投喂量时达到最理想效果。说明发酵饲料的额外投喂对中华绒螯蟹的生长、抗氧化、免疫和蛋白代谢各方面均有益处，并且最适宜额外投喂量为10%。
  参考文献（略）。